INTERFERENCE OF ALDICARB IN INFECTIVE FORMS OF Meloidogyne incognita AND ITS EFFECTS ON REPRODUCTION IN SOYBEAN

Visualizações: 718

Autores

  • Esdras Henrique da Silva Instituto Federal do Tocantins, Campus Colinas do Tocantins, Palmas, Tocantins.
  • Vicente Paulo Campos Universidade Federal de Lavras, Departamento de Fitopatologia, Lavras, Minas Gerais.
  • Fernando da Silva Rocha Universidade Federal de Minas Gerais, Campus Montes Claros, Núcleo de Ciências Agrárias, Montes Claros, Minas Gerais.
  • Walmes Marques Zeviani Universidade Federal do Paraná, Campus III, Departamento de Estatística, Curitiba, Paraná.
  • Willian César Terra Universidade Federal de Lavras, Departamento de Fitopatologia, Lavras, Minas Gerais.
  • Renê Luís de Oliveira Rigitano Universidade Federal de Lavras, Departamento de entomologia, Lavras, Minas Gerais.

DOI:

https://doi.org/10.32404/rean.v7i2.4367

Resumo

The effect of aldicarb on mortality, motility, and reproduction of M. incognita in soybean was studied. The mortality of second-stage juveniles (J2) in aldicarb solution (5 and 50 μg mL-1) was only high at 20 days of exposure, being higher in the concentration of 50 μg mL-1 and lower in control (water). Motility was inversely proportional to the exposure time, and at 20 days of incubation, the number of J2 mobiles was statistically equal for both concentrations evaluated. There was a reduction inversely proportional to the number of galls and eggs per gram of root according to the J2 incubation time in water and aldicarb (5, 10, and 20 days). J2, when incubated in 50 μg mL-1 aldicarb for 5 and 10 days, always provided the same values regarding the number of galls and eggs per gram of root. The incubation for 20 days resulted in the loss of J2 infectivity, both in water and in aldicarb (5 and 50 μg mL-1), with practically no galls and eggs. When the J2 were incubated in the soil with the application of aldicarb solution (5 and 50 μg mL-1) or water (control), followed by soybean planting, 5, 10 and 20 days after, the J2 infectivity was null in the treatments with aldicarb (5 and 50 μg mL-1). However, when the J2-infested soil was sprayed with pure water (control), gall formation and reproduction decreased with the J2 incubation period, with a drastic reduction from the 5th day. Therefore, exposure to aldicarb affects the life cycle of M. incognita in soybeans.

Biografia do Autor

Esdras Henrique da Silva, Instituto Federal do Tocantins, Campus Colinas do Tocantins, Palmas, Tocantins.

Eng. Agrônomo - UFLA

Mestrado em Fitopatologia - UFLA

Doutorado em Fitopatologia - UNB

Vicente Paulo Campos, Universidade Federal de Lavras, Departamento de Fitopatologia, Lavras, Minas Gerais.

Bolsista de Produtividade de Pesquisa do CNPq Nível 1A. Possui graduação em Agronomia pela Universidade Federal de Viçosa (1970), mestrado em Agronomia (Fitopatologia) pela Universidade Federal de Viçosa (1973), doutorado em Fitopatologia pela Universidade estadual de Carolina do Norte- Raleigh, N. C., USA. (1979) e pós doctor em morfologia de Fitonematóides pelo Biologische Bundesanstalt fuer Land-und Forstwirstschaft, Institut fuer Nematologie, Muenster, Alemanha (1986). Atualmente é professor titular da Universidade Federal de Lavras. Tem experiência na área de Agronomia, com ênfase em Fitopatologia, atuando principalmente nos seguintes temas: controle biológico de fitonematóides, migração, parasitismo e controle alternativo de fitonematóides, relação nematóides/planta, busca por moléculas tóxicas a fitonematóides em extratos vegetais, resíduos agricolas, culturas fungicas e bacterianas, etc.

Fernando da Silva Rocha, Universidade Federal de Minas Gerais, Campus Montes Claros, Núcleo de Ciências Agrárias, Montes Claros, Minas Gerais.

Possui graduação em Agronomia pela Universidade Federal de Lavras-UFLA, mestrado e doutorado pela UFLA, pós-doutorado pela UFLA em Fitopatologia/Química, pós-doutorado pela University of California, Riverside-USA, em Nematologia. Atualmente é professor Adjunto da Universidade Federal de Minas Gerais, Campus Montes Claros-MG e Coordenador do Laboratório de Pesquisa em Fitopatologia. Tem experiência na área de Agronomia, com ênfase em Fitopatologia, atuando principalmente nos seguintes temas: manejo de fitonematoides, estudo comportamental de Meloidogyne spp., desenvolvimento de nematicidas, bionematicidas e produtos com ação fungicida, diagnose, controle biológico e controle químico de fitopatógenos. 

Walmes Marques Zeviani, Universidade Federal do Paraná, Campus III, Departamento de Estatística, Curitiba, Paraná.

Engenheiro Agrônomo pela Universidade Federal da Grande Dourados (2003-2007) e Mestre (2008-09) e Doutor (2009-13) em Estatística & Experimentação Agropecuária pela Universidade Federal de Lavras. Professor Assistente I do Departamento de Estatística da Universidade Federal do Paraná 

Willian César Terra, Universidade Federal de Lavras, Departamento de Fitopatologia, Lavras, Minas Gerais.

Graduado em Agronomia pela Universidade Federal de Lavras (2010). Mestrado em Fitopatologia pela Universidade Federal de Lavras (2012) e Doutorado em Fitopatologia pela Universidade Federal de Lavras com sanduiche no laboratório de Nematologia da Universidade de Wageningen, Holanda. Atualmente está realizando pós doutorado pela Empresa de Pesquisa Agropecuária de Minas Gerais (EPAMIG). Tem experiência na área de Agronomia, com ênfase em Fitopatologia, Nematologia, Controle biológico de doenças, patossistema Meloidogyne spp. x cafeeiro

Renê Luís de Oliveira Rigitano, Universidade Federal de Lavras, Departamento de entomologia, Lavras, Minas Gerais.

Possui graduação em Agronomia pela Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz (1977), mestrado em Entomologia pela Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz (1979) e doutorado em Entomologia Inseticidas - University of London (1985). Atualmente é professor titular da Universidade Federal de Lavras. Tem experiência na área de Agronomia, com ênfase em Entomologia Agrícola, atuando principalmente nos seguintes temas: Toxicologia dos Inseticidas.

Referências

(I) Andaló, V., Moreira, G.F., Maximiniano, C., Moino Junior, A., Campos, V.P., 2009. Influence of herbicides on lipid reserves, mortality and infectivity of Heterorhabditis amazonensis (Rhabditida: Heterorhabditidae). Nematologia Mediterranea, Bari, 37(1), 11-15.

(II) Bonetti, J.I.S., Ferraz, S., 1981. Modificações do método de Hussey & Barker para extração de ovos de Meloidogyne exigua em raízes de cafeeiro. Fitopatologia Brasileira, 6(1), 553.

(III) Campos, H.D., Campos, V.P., Pozza, E.A., 2006. Efeito do tempo e da temperatura de incubação de juvenis do segundo estádio (J2) no teor de lipídio corporal e no parasitismo de Meloidogyne javanica em soja. Fitopatologia Brasileira, 31(4), 387-393.

(IV) Campos, V.A.C., Machado, A.R.T., Silva, W.J.R., Lopes, K.C., Terra, W.C., Campos, V.P., Oliveira, D.F., 2016. Estirillactonas de Cryptocarya aschersoniana Mez. (Lauraceae Juss.) com atividade contra Meloidogyne spp. e interação in silico com provável fumarase de Meloidogyne hapla. Química Nova, 39(2), 130-136.

(V) Carneiro, R.M.D., Almeida, M.R.A., 2001. Técnica de eletroforese usada no estudo de enzimas dos nematoides de galhas para identificação de espécie. Nematologia Brasileira, 25(1), 35-44.

(VI) Chen, S.Y., Dickson, D.W., 2000. A technique for determining live second-stage juveniles of Heterodera glycines. Journal of Nematology, 32(1), 117-121.

(VII) Duerr, J.S., Han, H.P., Fields, S.D., Rand, J.B., 2008. Identification of Major Classes of Cholinergic Neurons in the Nematode Caenorhabditis elegans. The Journal of Comparative Neurology, 506(3), 398-408.

(VIII) Freire, E.S., Campos, V.P., Dutra, M.R., Rocha, F.S., Silva, J.R.C., Pozza, E.A., 2007. Infectividade de juvenis do segundo estádio de Meloidogyne incognita em tomateiro após privação alimentar em solo e água em diferentes condições. Summa Phytopathologica, 33(3), 270-274.

(IX) Hafez, S.L., Sundararaj, P., 2000. Efficacy and persistence of nematicides against root-knot nematode, Meloidogyne incognita on tomato. Indian Journal of Nematology, 10(1), 37-40.

(X) Hague, N.G.M., Pain, B.F., 1973. The effect of organophosphorus compounds and oxime carbamates on the potato cyst nematode Heterodera rostochiensis Woll. Pesticide Science, 7(4), 459- 465.

(XI) Hough, A., Thomason, I.J., 1975. Effects of aldicarb on the behavior of Heterodera schachtii and Meloidogyne javanica. Journal of Nematology, 7(3), 221-229.

(XII) Hough, A., Thomason, I.J., Farmer, W.J., 1975. Behavior of aldicarb in soil relative to control of Heterodera schachtii. Journal of Nematology, 7(3), 214-221.

(XIII) Houghton, P.J., Ren, Y., Howes, M.J., 2006. Acetylcholinesterase inhibitors from plants and fungi. Natural Products Reports, 23(2), 181-199.

(XIV) Huang, S.P., Resende, I.C., Souza, P.E., Campos, V.P., 1983. Effect of aldicarb, ethoprop and carbofuran on control of coffee root-knot nematodes Meloidogyne exigua. Journal of Nematology, 15(4), 510-514.

(XV) Huang, S.P., Van Gundy, S.D., 1976. Effects of aldicarb and its sulfoxide and sulfone on the biology of Tylenchus semipenetrans. Journal of Nematology, 10(2), 100-106.

(XVI) Hussey, R.S., Barker, K.R., 1973. A comparison of methods for colecting inocula of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Repórter, 57(12), 1025-1028.

(XVII) Jardim, I.N., Oliveira, D.F., Silva, G.H., Campos, V.P., Souza, P.E., 2018. Cinnamaldehyde from the essential oil of Cinnamomum cassia controls Meloidogyne incognita in soybean plants. Journal of Pesticide Science, 91(1), 479-487.

(XVIII) Kang, J.S., Kim, E., Lee, S.H., Park, I.K., 2013. Inhibition of acetylcholinesterases of the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, by phytochemicals from plant ssential oils. Pesticide Biochemistry and Physiology, 105(1), 50-56.

(XIX) Miller, P.M., 1970. Failure of several non-volatile and contact nematicides to kill eggs in cysts of Heterodera tabacum. Plant Disease Reporter, 54(8), 781-783.

(XX) Nelmes, A.J., 1970. Behavioral responses of Heterodera rostochiesis larvae to aldicarbe and its sulfoxide and sulfone. Journal of Nematology, 2(3), 223-227.

(XXI) Nelmes, A.J., 1971. The permeability of nematodes to aldicarbea nematicidal oxime carbamato. Mededelingen Faculteit Landbomwwetenschappen, 36(1), 904-914.

(XXII) Opperman, C.H., Chang, S., 1991. Effects of aldicarb and fenamiphos on acetylocholinesterase and motility of Caenorhabditis elegans. Journal of Nematology, 23(1), 20-27.

(XXIII) Piffer, R., Rigitano, R.L.O., 1991. Lixiviação e degradação do inseticida aldicarbe em dois diferentes solos. Ciência e Prática, 15(3), 355-363.

(XXIV) R Development Core Team, 2009. R: A language and environment for statistical computing. http://www.R-project.org (acessado 25 de maio de 2009).

(XXV) Rocha, F.S., Campos, V.P., 2003. Efeito de baixa dose de aldicarbe nos processos de eclosão a penetração de juvenis do segundo estádio de Meloidogyne incognita. Nematologia Brasileira, 27(2), 185-192.

(XXVI) Rocha, F.S., Campos, V.P., Fernandes, M.F.G., Muniz, M.F.S., 2016. Migration and reproduction of Meloidogyne incognita in two soil textures. Nematropica, 46(2), 162-171.

(XXVII) Rocha, F.S., Catão, H.C.R.M., Muniz, M.F.S., Campos, V.P., Civil, N., 2015. Correlation among methods to estimate lipid reserves of second-stage juveniles and its relatioship with infectivity and reproduction of Meloidogyne incognita. Nematology, 17(3), 345-352.

(XXVIII) Schuske, K., Begy, A.A., Jorgensen, E.M., 2004. The GABA nervous system in Caenorhadditis elegans. Trends in Sheuroscience, 27(4), 407-414.

(XXIX) Sikora, R.A., Hartwig, J., 1991. Mode-of-action of the carbamate nematicides cloethocarb, aldicarb and carbofuran on Heterodera schachtii: 2. systemic ativity. Revue de Nématologie, 14(4), 531-536.

(XXX) Silva, E.H., Campos, V.P., Rocha, F.S., Zeviani, W.M., Terra, W.C., Rigitano, R.L.O., 2019. Efeito do aldicarbe no ciclo de vida de Meloidogyne incognita. Revista de Agricultura Neotropical, 6(3), 82-91.

(XXXI) Steele, A.E., Hodges, L.R., 1975. In vitro and in vivo effects of aldicarb on survival and development of Heterodera schachtii. Journal of Nematology, 7(3), 305-312.

(XXXII) Stewart, G.R., Perry, R.N., Wright, D.J., 1994. Immunocytochemical studis in the occurrence of gamma- aminobutyric acid (GABA) in the nervous system of the nematodes Panagrellus redivivus, Meloidogyne incognita and Globodera rostochiensis. Fundamental and Applied Nematology, 17(5), 433-439.

(XXXIII) Stewart, G.R., Perry, R.N., Wright, D.J., 2001. Occurrence of dopamine in Panagrellus redivivus and Meloidogyne incognita. Nematology, 3(6), 843-848.

(XXXIV) Van Gundy, S.D.V., Bird, A.F., Wallace, H.R., 1967. Aging and starvation in juvenile of Meloidogyne javanica and Tylenchulus semipenetras. Phytopathology, 57(6), 559-571.

(XXXV) Van Gundy, S.D.V., Mckerry, M.V., 1977. Action of nematicides, in: Horsfall, J.G., Cowling, E.B., (Ed.), Plant disease: an advanced treatise. Academic, New York, p. 263-280.

(XXXVI) Wang, K., Luo, C., Liu, H., Xu, J., Sun, W., Zhou, L., 2012. Nematicidal activity of the alkaloids from Macleaya cordata against certain nematodes. African Journal of Agricultural Research, 7(44), 5925-5929.

(XXXVII) Wright, D.J., Perry, R.N., 2006. Reproduction, physiology and biochemistry, in: Perry, R.N., Moens, M., (Ed.), Plant nematology. Walhingford, CAB International, p. 187-209.

Downloads

Publicado

2020-06-29

Como Citar

da Silva, E. H., Campos, V. P., Rocha, F. da S., Zeviani, W. M., Terra, W. C., & Rigitano, R. L. de O. (2020). INTERFERENCE OF ALDICARB IN INFECTIVE FORMS OF Meloidogyne incognita AND ITS EFFECTS ON REPRODUCTION IN SOYBEAN. Revista De Agricultura Neotropical, 7(2), 1–8. https://doi.org/10.32404/rean.v7i2.4367

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)